Micotoxicosis en langostinos
Mecanismos e influencias

La disponibilidad limitada y el aumento de los costes de la harina de pescado son algunos de los mayores retos a los que se enfrenta el sector de la cría de langostinos.

⇰ Para hacer frente a esta situación, el uso de ingredientes de origen vegetal en lugar de harina de pescado en los piensos para langostinos ha ido en aumento.

Sin embargo, el uso de cultivos en los piensos aumenta el riesgo de contaminación con hongos y micotoxinas, así como la incidencia de micotoxicosis en los langostinos.

La micotoxicosis influye negativamente en el peso corporal, el crecimiento, la resistencia a las enfermedades y la capacidad de supervivencia de los langostinos, lo que reduce la productividad de la acuicultura.

La bioacumulación de micotoxinas puede suponer un riesgo para los seres humanos a través del consumo de langostinos, lo que significa que es una amenaza para la seguridad alimentaria y la salud pública.

Además, las micotoxinas son genotoxicas, carcinógenas e inmunosupresoras.

Aunque desde los años sesenta se viene investigando sobre las micotoxinas, aún falta información sobre la micotoxicosis en los langostinos.

Por ello, hay que esforzarse por vigilar su nivel de contaminación con hongos micotoxigénicos y micotoxinas.

Micotoxinas en los piensos para camarones
Fuentes de contaminación

Las micotoxinas son metabolitos secundarios producidos por hongos filamentosos que contaminan una amplia variedad de alimentos y piensos en todo el mundo (Marroquín-Cardona et al., 2014).

Se conocen cientos de micotoxinas. Entre ellas, las aflatoxinas (AF), la citrinina, la patulina, el ácido penicílico, la ocratoxina A (OTA), el deoxinivalenol (DON), las fumonisinas (FUMS) y la zearalenona (ZEN) son los contaminantes más comunes en los granos de cereales, y la mayoría de ellos son producidos por los tres géneros de hongos, Aspergillus, Penicillium y Fusarium (Ismaiel y Papenbrock, 2015).

⇰ Estos hongos pueden infectar una variedad de cultivos y productos agrícolas, incluyendo trigo, arroz, maíz, nueces, maíz, soja y sorgo, afectando a muchos productos agrícolas antes y después de la cosecha, así como a piensos acabados (Pleadin et al., 2019).

La acuicultura es uno de los sectores alimentarios de más rápido crecimiento en todo el mundo y la cría de langostinos es uno de los sectores más rentables y de mayor crecimiento de la industria marisquera mundial.

Según la Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO), en 2010 la producción mundial de langostinos de piscifactoría se estimaba en casi 3,78 millones de toneladas, con un aumento de la producción de más del triple desde 1,1 millones de toneladas en 2000, con una tasa media de crecimiento anual del 14,5% desde 1950.

Las especies de langostino más cultivadas son el langostino blanco (Litopenaeus vannamei) y el langostino tigre negro (Penaeus monodon). Otras especies cultivadas de menor importancia son el langostino kuruma (Penaeus japonicus) y el langostino carnoso (Penaeus chinensis), el langostino blanco indio (Penaeus indicus) y el langostino banana (Fenneropenaeus merguiensis) (Tacon et al., 2013).

El langostino blanco (L. vannamei) ocupó en 2010 el primer puesto en la producción total de peces y crustáceos de piscifactoría, con un valor total de 11.230 millones de dólares.

Los langostinos tienen una rápida tasa de crecimiento, un corto periodo de cultivo, un alto valor de exportación y una gran demanda en el mercado. Como resultado, la industria ha crecido rápidamente en todo el mundo.

Sin embargo, la cría de langostinos se enfrenta a muchos retos, como los elevados costes de los programas de alimentación (Ayisi et al., 2017).

La cría de langostinos requiere principalmente piensos compuestos comerciales que les proporcionen los nutrientes necesarios para el crecimiento y el mantenimiento de su salud (Oliveira y Vasconcelos, 2020).

El 40,0% de todos los peces de cultivo, incluidos los langostinos, requieren una gran cantidad de pienso rico en proteínas (Tacon y Metian, 2008).

Las proteínas son los nutrientes más caros en las dietas para la cría de langostinos (Ayisi et al., 2017).

La harina de pescado es la fuente de proteínas más utilizada en la alimentación comercial del langostino debido a su alta digestibilidad, aminoácidos esenciales y perfil de ácidos grasos (Oujifard et al., 2012).

⇰ En 2008, la industria del langostino consumió el 27,2% de la harina de pescado utilizada en los alimentos acuícolas, lo que la convierte en el mayor consumidor de esta fuente de proteína (Ayisi et al., 2017).

Sin embargo, el aumento de la demanda de producción acuícola ha dado lugar a un aumento de la demanda de harina y aceite de pescado y la consiguiente escasez de peces pelágicos y otras especies de peces utilizados en su producción (Oliveira y Vasconcelos, 2020).

⇰ Por lo tanto, la disponibilidad limitada y el aumento de los costes de la harina de pescado han dado lugar a un mayor uso de proteínas vegetales como alternativas a la harina y el aceite de pescado en los piensos para langostinos y peces (Katya et al., 2016).

En las últimas décadas, se han estudiado diferentes fuentes de proteínas vegetales para sustituir a la harina de pescado en la alimentación de los langostinos, como la harina de soja (Bulbul et al., 2015; Sharawy et al., 2016; Yang et al., 2015), la harina de colza, la harina de cacahuete (Bulbul et al., 2014), la harina de arroz (Macias-Sancho et al., 2014) y la torta de aceite de girasol (Dayal et al., 2011).

Sin embargo, los piensos de origen vegetal para langostinos son susceptibles de contaminación con diversos hongos y micotoxinas.

La presencia de micotoxinas en piensos comerciales para langostinos se ha descrito en diferentes lugares del mundo.

El estudio más antiguo documentado sobre la presencia de micotoxinas se realizó en piensos para langostino tigre negro (P. monodon) en Filipinas (Bautista et al., 1994).

Se detectaron aflatoxinas en piensos comerciales para langostinos en las regiones oriental y meridional de Tailandia (Bintvihok et al., 2003).

En Tailandia, las muestras de piensos para langostinos y peces estaban contaminadas con zearalenona y OTA, mientras que, en India, los piensos para langostinos estaban contaminados con AF (Fegan y Spring, 2007).

En 2014, se analizaron muestras de piensos para peces y langostinos de Europa (Croacia y Portugal) y el sudeste asiático (Singapur, India, Tailandia y Myanmar) para la detección de AF, ZEN, DON, FUM y OTA (Gonçalves et al., 2018a), y los resultados mostraron una mayor presencia de FUM en las muestras europeas que en el sudeste asiático.

• ⇰ Las micotoxinas restantes mostraron niveles medios y máximos de aparición similares en Europa y el sudeste asiático, detectándose micotoxinas en todas las muestras analizadas.
• ⇰ Además, en Europa, el 50% de las muestras tenían más de una micotoxina por muestra, y en Asia, el 84% de las muestras estaban contaminadas con más de una micotoxina.

En 2015, las muestras de piensos para peces y langostinos en Europa (Dinamarca, Austria, Países Bajos y Alemania) y el sudeste asiático (Vietnam, Indonesia y Myanmar) mostraron una alta contaminación por DON y un mayor riesgo de coocurrencia en ambas regiones (Gonçalves et al., 2017).

En 2016, los piensos para langostinos de la India y los piensos para peces de Indonesia, Myanmar, Taiwán y Tailandia mostraron contaminación por micotoxinas, y las muestras de piensos para peces mostraron una menor contaminación que los piensos para langostinos y una contaminación relativamente alta de DON en los piensos para langostinos (Gonçalves et al., 2018b).

Efectos de las micotoxinas en la salud de los langostinos

Aflatoxinas  
Mecanismos y efectos en la salud de los langostinos

Las aflatoxinas son las micotoxinas más comúnmente encontradas en los piensos para langostinos, producidas principalmente por Aspergillus flavus y Aspergillus parasiticus, y en menor medida, por Aspergillus nomius y Aspergillus bombycis, Aspergillus pseudotamari y Aspergillus ochraceoroseus (Varga et al., 2011).

Se clasifican según su fluorescencia azul o verde bajo luz ultravioleta en AFB₁, AFB₂, AFG₁ y AFG₂ (Dhanasekaran et al., 2011), apareciendo en una gran variedad de alimentos para animales, incluyendo maíz, cacahuetes molidos, semillas de algodón de arroz y sorgo, especias, cereales, soja, cacao y carne (Patriarca y Pinto, 2017; Vila-Donat et al., 2018).

Las aflatoxinas inducen toxicidad al metabolizarse en el hígado por la generación de especies reactivas del oxígeno intracelulares (ROS, por sus siglas en inglés), como aniones superóxido, radicales hidroxilo y peróxido de hidrógeno (H₂O₂), bajo la acción del citocromo P450.

• ⇰ Estas ROS atacan al ADN celular, al ARN, a las proteínas y a las membranas celulares, lo que provoca un deterioro de la función celular, estrés oxidativo, daños en el ADN, citólisis y apoptosis (Asim et al., 2011; Yang et al., 2016).
• ⇰ También pueden afectar al gen supresor de tumores p53, causante del hepatocarcinoma (Kew, 2013).

El metabolismo de las aflatoxinas se produce principalmente en el hígado bajo la acción del citocromo P450 en epóxidos reactivos electrófilos.

• ⇰ Los metabolitos epóxido se unen al ADN, ARN y macromoléculas celulares en el hígado (Abrar et al., 2013).

Las aflatoxinas suelen asociarse al desarrollo de carcinoma hepatocelular (CHC) en humanos debido a sus propiedades mutagénicas y carcinogénicas. Por ello, se han clasificado como un factor de riesgo importante, junto con el virus de la hepatitis B (VHB) y el virus de la hepatitis C (VHC), para el CHC (Bosetti et al., 2014).

AFLATOXICOSIS EN HUMANOS

La AFB₁ es el hepatocarcinógeno experimental más potente conocido en humanos (Humans and Cancer, 2002), aunque ningún modelo animal expuesto a la toxina ha desarrollado CHC.

⇰ También representa aproximadamente el 9,2% de todos los nuevos cánceres en el mundo (Ferlay et al., 2010). Otras enfermedades hepáticas, como la cirrosis (Humans, 2014) y la hepatomegalia (Gong et al., 2012), también se han asociado a la toxicidad de las aflatoxinas en humanos.

AFLATOXICOSIS EN PESCADO & LANGOSTINOS

El deterioro de la función hepática y el estrés oxidativo son las consecuencias previstas de la aflatoxicosis en peces y animales de experimentación.

Las aflatoxinas pueden causar graves problemas de salud y reducir el rendimiento de los cultivos de langostinos.

En el langostino, se ha informado ampliamente de que la AFB₁ afecta:

• ⇰ Crecimiento
  
• ⇰ Parámetros sanguíneos
  
• ⇰ Parámetros histológicos
  
• ⇰ Actividad enzimática antioxidante
  
• ⇰ Expresión de genes relacionados con el transcriptoma y el sistema inmunitario en el hepatopáncreas

El hepatopáncreas es el principal órgano afectado por la AFB₁ de la dieta, ya que es el principal órgano digestivo y sistema inmunitario de los langostinos (Pérez-Acosta et al., 2016) y sus funciones están relacionadas con la síntesis y secreción de enzimas digestivas y moléculas inmunitarias, absorción de nutrientes, almacenamiento de reservas y excreción (Zhao et al., 2017).

Además, muchos estudios también han señalado que la AFB₁ puede dañar la barrera de la mucosa intestinal e inducir un desequilibrio en las poblaciones microbianas intestinales (Fang et al., 2020; Wang et al., 2018).

Varios estudios han descrito los efectos de la AFB₁ sobre el crecimiento y la respuesta inmunitaria de los langostinos. Por ejemplo:

La exposición de L. vannamei a AFB₁ (500 μg/kg AFB₁) durante 8 semanas disminuyó significativamente el peso corporal final (PCF), la ganancia de peso (GP, %) y aumentó significativamente la actividad de la óxido nítrico sintasa inducible (iNOS) y los niveles de glutatión (GSH) y malondialdehído (MDA) en el hepatopáncreas (Yu et al., 2018).

Del mismo modo, los juveniles de L. vannamei alimentados con una dieta que contenía AFB₁ durante 42 días presentaron una disminución significativa del peso medio, ingesta de alimentos, tasa de crecimiento y eficiencia de retención de nitrógeno, y un aumento significativo de la actividad enzimática de la fosfatasa alcalina (ALP) y de la glutatión S transferasa (GST) en el hepatopáncreas (Tapia-Salazar et al., 2022).

En el mismo contexto, la exposición de L. vannamei a AFB₁ durante 8 semanas disminuyó significativamente la ganancia de peso (12000 µg AFB₁/kg), la capacidad antioxidante total (2000 µg AFB₁/kg), GST, superóxido dismutasa (SOD), Na y K ATPasa en hepatopáncreas, y aumentó significativamente GST en la hemolinfa (1600 µg AFB1/kg) (Wang et al., 2012).

Los juveniles de L. vannamei alimentados con dietas que contenían granos contaminados naturalmente con aflatoxinas totales (500, 1000 y 2000 μg/kg durante 28 días) mostraron una disminución significativa de la ganancia de peso y la ingesta de alimento, y un aumento significativo del índice de conversión.

Además, el análisis histológico del hepatopáncreas reveló que la actividad de las células B y la actividad mitótica celular disminuyeron significativamente, mientras que el almacenamiento de lípidos, la atrofia epitelial tubular y la descamación de los hepatopancreatocitos aumentaron significativamente (Tapia-Salazar et al., 2012).

F. indicus alimentados con dietas que contenían 1600 ppb de AFB₁ durante 8 semanas mostraron una disminución significativa del peso final, la tasa de supervivencia, el recuento total de hemocitos, la proteína plasmática total y la actividad fagocítica y un aumento significativo de la tasa de crecimiento específico.

El examen histopatológico del hepatopáncreas mostró células R atrofiadas, necrosis grave y contracción de los túbulos, infiltración de hemocitos y células fibroblásticas que producían un aspecto exterior similar a la fibrosis, degeneración celular y núcleos picnóticos en el lumen, necrosis extendida y destrucción completa de las células B, aislamiento completo del tejido conjuntivo del tejido del hepatopáncreas y en el tejido del intestino medio y separación entre las capas mucosa y submucosa (Ghaednia et al., 2013).

El examen ultraestructural del hepatopáncreas de P. monodon alimentado con una dieta que contenía 1000 y 2000 ppb de AFB₁ durante 8 semanas mostró vacuolización y condensación nuclear, aparición de material denso a los electrones, forma irregular del núcleo, pérdida de la membrana nuclear y fragmentación del retículo endoplásmico, así como hinchazón de las mitocondrias, vacuolación y pérdida de orgánulos en algunas zonas, formación de vesículas en el citoplasma, pérdida de microvellosidades, redondeo celular y necrosis extensa (Radhika et al., 2012).

La exposición de juveniles de L. vannamei a 25, 50, 100, 500 y 1000 µg/kg de AFB₁ indujo una disminución significativa en la ganancia de peso, la tasa de crecimiento específica, y un aumento significativo en la tasa de supervivencia, los niveles de aspartato aminotransferasa (AST) y alanina aminotransferasa (ALT), y la actividad antioxidante total en suero (Zeng et al., 2016).

L. vannamei alimentados con 15 ppm de AFB₁ durante 8 días presentaron una disminución significativa de la tasa de supervivencia, un aumento significativo de los niveles de SOD, GST, glutatión peroxidasa (GPx) y catalasa (CAT), y una expresión diferencial de 1024 genes implicados en funciones que incluyen el metabolismo de la peroxidasa, la transducción de señales, el control transcripcional, la apoptosis, la proteólisis, la endocitosis, la adhesión celular y la unión celular.

También indujo graves alteraciones histológicas en el hepatopáncreas de los langostinos, incluyendo la separación entre la capa mioepitelial y el epitelio del hepatopáncreas, exceso de grasa en muchas células vacuoladas, picnosis nuclear, lisis celular y necrosis celular (Zhao et al., 2017).

En un estudio más reciente, la exposición de L. vannamei a 168,3 μg/kg de AFB₁ durante 58 días disminuyó significativamente la ganancia de peso, la tasa específica de crecimiento, la tasa de supervivencia, el coeficiente de eficiencia proteica, el valor productivo proteico y los niveles de AST y ALT en el suero y el hepatopáncreas, aumentando significativamente el índice de conversión. También indujo un aumento significativo del nivel sérico de MDA y de las actividades de GST y GPx, mientras que disminuyó significativamente sus actividades en el hepatopáncreas.

Además, la AFB₁ disminuyó significativamente la expresión de genes relacionados con la inmunidad, incluyendo el factor de diferenciación mieloide 88 (MyD88), Dorsal, factor 6 asociado al receptor del factor de necrosis tumoral (TRAF6), Relish, Domeless, citocromo P450 y penaeidina 3a (Chen et al., 2020).

L. vannamei alimentado con dietas contaminadas con 200 μg/kg de AFB₁ durante 42 días sufrió una reducción significativa de la ingesta de alimento, la tasa de crecimiento y la eficiencia de retención de nitrógeno y un aumento significativo de la actividad de ALP y GST (García-Pérez et al., 2020).

La exposición de P. vannamei a 500 μg/kg de AFB₁ durante seis semanas disminuyó significativamente las tasas de supervivencia, la ganancia de peso y la expresión de genes relacionados con la inmunidad en el intestino, incluyendo Rab, GST, mucin-like-PM, Dorsal, Relish y Pro-PO.

La AFB₁ indujo daños en el sistema antioxidante y una desregulación de la microbiota intestinal en L. vannamei alimentado con una dieta que contenía 5 ppm de AFB₁ durante 30 días, ya que indujo un aumento significativo seguido de una disminución significativa de las actividades CAT, SOD y GPX y un aumento significativo de MDA en el intestino y el hepatopáncreas.

Además, se observó un desequilibrio en la microbiota intestinal a nivel de filo, la abundancia relativa de Proteobacterias y Firmicutes aumentó, y la abundancia relativa de Bacteroidetes disminuyó.

A nivel de género, las abundancias relativas de Vibrio y Photobacterium aumentaron significativamente, y las abundancias relativas de Flavobacterium_sp_M y Tenacibaculum disminuyeron (Wang et al., 2018).

La exposición de L. vannamei a 977,11 y 1605,61 μg/kg de AFB₁ durante 28 días indujo un aumento significativo de las actividades AST, ALT en la hemolinfa y del valor del índice de alternancia histológica (IHA) del hepatopáncreas, con una disminución significativa de la proteína total y la grasa (triglicéridos y colesterol) en la hemolinfa.

El examen histopatológico del hepatopáncreas mostró un aspecto irregular y anormal de la estructura tubular del hepatopáncreas, vacuolización de las células tubulares, separación del epitelio y la capa mioepitelial, necrosis de las células hepatopancreáticas y núcleos picnóticos, inflamación hepatopancreática y penetración de hemocitos en el espacio entre los túbulos (Jamshidizadeh et al., 2019).

Toxina T-2  
  Mecanismos y efectos en la salud de los langostinos

Hay poca información sobre la toxicidad de otras micotoxinas para los invertebrados acuáticos, pero en muchos estudios se ha señalado que la toxina T-2 perjudica el crecimiento y la respuesta inmunitaria de los langostinos.

Los tricotecenos (principalmente la toxina T-2) son bien conocidos por su capacidad de inhibir la síntesis de proteínas eucariotas al unirse a la subunidad 60S de los ribosomas eucariotas e inhibir la actividad de la peptidil transferasa.

⇰ Esto conduce a la inhibición de la iniciación, elongación o terminación del paso de elongación de la cadena en la síntesis de proteínas (Arunachalam y Doohan, 2013).

La toxina T-2 también puede:

• ⇰ Inhibir la síntesis de ADN y ARN (Minervini et al., 2004)
• ⇰ Alterar la estructura de la membrana celular (Diesing et al., 2011) y la función mitocondrial
• ⇰ Detener el ciclo celular (Pestka, 2010)
• ⇰ Inducen estrés oxidativo al aumentar la peroxidación lipídica y alterar las defensas antioxidantes, lo que acaba perjudicando la síntesis de proteínas y causando daños en el ADN (Doi and Uetsuka, 2011; Wu et al., 2014)

Se investigaron los efectos de la toxina T-2 sobre el crecimiento, la capacidad antioxidante y los hallazgos histopatológicos en el hepatopáncreas de L. vannamei mediante la exposición dietética a 0,5, 1,2, 2,4, 4,8 y 12,2 mg/kg de toxina T-2 durante 20 días y se informó de que la concentración de mT-2 en el hepatopáncreas aumentó significativamente de forma dependiente de la dosis. Además, las tasas de crecimiento y supervivencia disminuyeron significativamente.

Por otra parte, la concentración de MDA aumentó significativamente a una dosis ≥2,4 mg/kg de toxina T-2, mientras que la SOD y la GPx, la capacidad antioxidante total (T-AOC) y el contenido de GSH aumentaron a una dosis de 2,4-4,8 mg/kg de toxina T-2, pero disminuyeron a la dosis de 12,2 mg/kg.

Los cambios histopatológicos en el hepatopáncreas fueron dependientes de la dosis, con autofagia evidente en la dosis de exposición más alta (Deng et al., 2017).

La toxina T-2 indujo efectos tóxicos en la hemolinfa, el sistema inmunitario y el hepatopáncreas de L. vannamei tras una exposición alimentaria a 0,5, 1,2, 2,4 y 4,8 mg/kg durante 20 días, como una reducción significativa del aumento de peso, la tasa específica de crecimiento (en todas las dosis) y la tasa de supervivencia (0,5 y 1,2 mg/kg). Disminuyó significativamente la actividad de la enzima fenoloxidasa (todas las dosis), el recuento de hemocitos (2,4 mg/kg) y la concentración de albúmina (1,2, 2,4 y 4,8 mg/kg). Además, alteró la actividad de las enzimas de la hemolinfa GOT, GPT y ALP de forma dependiente de la dosis.

La exposición de L. vannamei a la toxina T-2 a concentraciones de 0,5, 1,2, 2,4, 4,8 y 12,2 mg/kg durante 20 días redujo significativamente el aumento de peso, la tasa específica de crecimiento y la tasa de supervivencia.

El examen histopatológico del intestino mostró cambios degenerativos y necróticos dependientes de la concentración, con una inflamación inicial del tejido de la mucosa a 0,5 y 1,2 mg/kg, que progresó hasta la desaparición de las vellosidades intestinales y la degeneración y necrosis de la submucosa a 12,2 mg/kg.

Las enzimas digestivas intestinales proteasa y amilasa disminuyeron significativamente con concentraciones crecientes de toxina T-2, mientras que la actividad de la lipasa aumentó con concentraciones mayores de toxina T-2 (Huang et al., 2019).

Se investigó el efecto de la toxina T-2 sobre las proteínas musculares de L. vannamei mediante la exposición a 1,2, 2,4, 4,8 y 12,2 mg/kg durante 20 días y se observó que la cantidad de proteína miofibrilar, sarcoplásmica y del estroma aumentaba a la baja concentración de 1,2 mg/kg de T2, mientras que las concentraciones más elevadas inducían descensos significativos de forma dependiente de la dosis.

En cambio, la proteína soluble en álcali mostró una tendencia opuesta, con una disminución a la baja concentración de toxina T-2 de 1,2 mg/ kg y un aumento a concentraciones más altas. Además, la toxina T-2 causó una disminución dependiente de la concentración en las actividades de calcio (Ca²⁺) ATPasa, magnesio (Mg²⁺) ATPasa y Ca²⁺Mg²⁺ ATPasa en los músculos (Huang et al., 2020).

La toxina T-2 afectó a los ácidos grasos, la distribución del agua y la histopatología muscular de L. vannamei, donde la exposición a 0,5, 1,5, 4,5 y 13,5 mg/kg durante 20 días afectó significativamente a la composición de ácidos grasos musculares con una disminución inicial de ácidos grasos saturados (ΣSFA), ácidos grasos monoinsaturados (ΣMUFA) y ácidos grasos poliinsaturados (ΣPUFA), seguida de un aumento en los grupos de dosis altas.

Además, la toxina T-2 afectó significativamente la distribución del agua en el músculo, donde las dosis altas redujeron el contenido de agua libre, lo que resultó en una reducción de la capacidad de retención de agua y, por lo tanto, cambios en la calidad del músculo del langostino (Bi et al., 2019).

Deoxinivalenol, Fumonisinas y Ocratoxina A  
  Efectos en la salud de los langostinos

Algunos estudios más han descrito otros efectos de las micotoxinas en los langostinos.

L. vannamei alimentado con dietas contaminadas con 250, 500 y 1000 μg DON/kg durante 5 semanas sufrió una disminución significativa de la ganancia de peso (1000 μg /kg) y un aumento significativo de la actividad GST (500 μg /kg) y SOD (1000 μg /kg), mientras que la expresión génica de SOD y GPx se redujo significativamente en dosis de 500 y 1000 μg/kg DON. Además, la expresión génica relacionada con la respuesta inmune del hepatopáncreas de HSP70, Toll 1 y Dorsal fue mayor a una dosis de 250 μg DON/kg, y la expresión de proPO, LGBP y PPAF fue significativamente mayor a una dosis de 1000 μg DON/kg.

El examen histopatológico reveló que los pliegues de la mucosa intestinal estaban deteriorados por la apoptosis en las células epiteliales intestinales, y el número de células B y los diámetros de los túbulos del hepatopáncreas se vieron afectados por diferentes dosis de DON (Xie et al., 2018).

L. vannamei expuesto a 0,5, 0,75 y 1,0 µg/g de FB₁ durante 18 días mostró una disminución significativa de la fenoloxidasa, el recuento total de hemocitos y la tasa de anión superóxido.

El hepatopáncreas mostró lesiones histopatológicas, incluyendo deformación de los túbulos del hepatopáncreas con pérdida de la estructura celular normal, presencia de melanización, y los túbulos mostrando vacuolización severa con retracción celular (Mexía-Salazar et al., 2008).

La alimentación de P. monodon con una dieta que contenía DON y OTA durante 8 semanas alteró significativamente el crecimiento y los parámetros inmunitarios.

Protección de los langostinos frente a las micotoxicosis

Se han desarrollado diversas estrategias para reducir los efectos tóxicos de las micotoxinas en los piensos, como:

• ✓ Descontaminación física (Grenier et al., 2014; Pankaj et al., 2018)
• ✓ Descontaminación química (Čolović et al., 2019)
• ✓ Descontaminación biológica (Shu et al., 2018)

Algunos de los compuestos utilizados en diferentes estudios para mitigar la toxicidad inducida por micotoxinas en los langostinos son los siguientes.

  Probióticos

Se ha demostrado que el uso de probióticos mejora significativamente la tasa de supervivencia y el crecimiento de los animales de acuicultura y de cría terrestre (Wang et al., 2019; Zhang et al., 2019).

En la cría de langostinos, los probióticos mejoran la tasa de digestibilidad y absorción y promueven el crecimiento, una morfología y flora intestinal saludables, una respuesta inmune robusta y la resistencia a las enfermedades (Amoah et al., 2019; Azad et al., 2019; Duan et al., 2018; Zuo et al., 2019).

La suplementación de Lactobacillus pentosus HC-2 (5 × 10⁸ UFC/g de alimento) a P. vannamei durante 6 semanas alivió la toxicidad inducida por AFB₁ (500 μg/kg) al aumentar la tasa de supervivencia y el porcentaje de ganancia de peso, mejorando la morfología intestinal y la estructura de la comunidad de la microbiota intestinal al aumentar significativamente la abundancia de Proteobacterias y disminuir la abundancia de Firmicutes y Bacteroidetes. También aumentó la expresión de genes inmunes, incluyendo Rab, GST, mucin-like-PM, Dorsal y Pro-PO (Fang et al., 2020).

Antioxidantes

Otros estudios incluyeron el uso de antioxidantes.

La suplementación con curcumina resultó beneficiosa para proteger a los juveniles de L. vannamei frente a la inmunotoxicidad causada por la AFB₁ (200 μg/kg).

Los polifenoles del té fueron eficaces en la protección de P. vannamei contra el deterioro de la calidad muscular del camarón inducido por AFB₁ (1,2-2,7 mg/kg de alimento), donde inhibió la expansión de los espacios de las fibras musculares y la inflamación e indujo un efecto protector significativo contra la disminución de los nutrientes musculares y los cambios en la composición proteica (Huang et al., 2021).

La quercetina, los polifenoles del té y la rutina son antioxidantes derivados de plantas ampliamente utilizados que poseen propiedades antioxidantes, antiinflamatorias y antitumorales.

Adsorbentes

La adición de arcilla a la dieta de L. vannamei expuesta a 200 μg/kg de AFB₁ durante 42 días en dosis de 4, 5 y 6 g/kg mejoró la retención de nitrógeno y disminuyó la actividad de ALP (6 g/ kg) y GST (4 g /kg) (García-Pérez et al., 2020).

Detoxificación

Un nuevo enfoque para la detoxificación de micotoxinas en langostinos es el uso de componentes naturales, como los ácidos biliares y el mioinositol.

Los ácidos biliares son moléculas detergentes sintetizadas a partir del colesterol en los vertebrados (Šarenac y Mikov, 2018) y funcionan como moléculas de señalización, regulando la detoxificación y el sistema antioxidante de los mamíferos mediante la activación de los receptores de hormonas nucleares (Baijal et al., 1998; Reschly et al., 2008).

El mioinositol es un nutriente esencial de tipo vitamínico que ha demostrado mejorar la capacidad antioxidante enzimática en la carpa. Sin embargo, en las gambas, el mioinositol mitigó ligeramente (pero no de forma significativa) los efectos negativos sobre el crecimiento, las actividades de las enzimas antioxidantes y la expresión de genes relacionados con el sistema inmunitario de L. vannamei causados por la exposición a la AFB₁ (Chen et al., 2020).

CONCLUSIONES

El aumento de ingredientes de origen vegetal en los piensos para acuicultura se considera uno de los retos de la cría de langostinos, debido a su mayor susceptibilidad a la contaminación fúngica y a la producción de micotoxinas, lo que acaba repercutiendo en la productividad de los langostinos.

Las micotoxinas afectan a la salud de las gambas a través de diversos mecanismos que interfieren en las funciones fisiológicas normales del organismo.

⇰ Se han adoptado diferentes enfoques para proteger contra la micotoxicosis, sin embargo, los estudios adicionales que utilizan nuevas herramientas respetuosas con el medio ambiente para combatir la contaminación por micotoxinas siguen siendo escasos y requieren más investigación.

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